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文檔簡介
1、第一部分小鼠肝臟部分熱缺血再灌注損傷對肝臟miR-155表達的影響
目的:探討小鼠肝臟部分熱缺血再灌注損傷對缺血肝組織miR-155表達的影響。
方法:取野生型 C57BL/6(WT)小鼠,將其隨機分為兩組:假手術組及手術組,每組20只,建立肝臟部分熱缺血再灌注損傷模型。假手術組(sham),不阻斷肝臟左葉、中葉血流,其余所有操作同手術組;手術組(I/R),阻斷肝臟左葉、中葉血流1小時后,松開血管夾,開放血流,進行再
2、灌注。缺血1小時再灌注6小時后,評估小鼠存活率,并采集全血血漿檢測谷丙轉氨酶(alanine aminotransferase, ALT)及谷草轉氨酶(aspertate aminotransferase, AST)水平以評估肝功能和缺血肝臟標本行HE染色,評價肝臟損傷程度,并且根據(jù)Suzuki’s標準,將肝臟損傷情況半定量進行統(tǒng)計學分析。通過TaqMan探針對肝組織進行逆轉錄實時定量聚合酶鏈反應(quantitative real-t
3、ime polymerase chain reaction,qRT-PCR)檢測缺血再灌注損傷對miR-155表達的影響。結果:小鼠缺血1小時再灌注6小時后,兩組小鼠存活率均達95%以上,可以達到實驗要求。小鼠肝臟經歷部分熱缺血再灌注損傷后,出現(xiàn)明顯的肝功能損害,手術組ALT和AST比假手術組明顯升高(P<0.0001)。肝臟損傷病理顯示:假手術組,小鼠肝組織結構基本正常,小葉中央靜脈,肝細胞索結構清晰,肝臟無淤血,細胞無變性壞死,肝竇
4、排列整齊,未見炎性細胞浸潤。手術組小鼠肝臟經歷1小時缺血6小時再灌注后,可見肝臟明顯淤血,肝細胞索紊亂排列,不同程度的水腫變性和空泡狀變,可見大量片狀壞死灶,伴有炎性細胞浸潤。與假手術組相比,手術組Suzuki’s評分顯著增高,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.0001)。與假手術組相比較,手術組小鼠肝臟缺血再灌注后損傷肝臟組織中miR-155的表達明顯升高,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。
結論:我們成功建立了小鼠部分熱缺血再
5、灌注損傷模型,缺血再灌注損傷增加肝臟miR-155的表達。
第二部分 miR-155缺失減輕小鼠肝臟部分熱缺血再灌注損傷與Kupffer細胞有關
目的:探討miR-155缺失是否通過調節(jié)Kupffer細胞進一步減輕小鼠肝臟部分熱缺血再灌注損傷。
方法:采用聚合酶鏈式反應(polymerase chain reaction, PCR)行microRNA-155基因敲除(miR-155-/-)小鼠鑒定。將小鼠分
6、為四組:(1)WT小鼠對照組:WT小鼠于手術前24小時尾靜脈注射與實驗組小鼠等量的磷酸鹽緩沖液,(2)miR-155-/-小鼠對照組:miR-155-/-小鼠于手術前24小時尾靜脈注射與實驗組小鼠等量的磷酸鹽緩沖液,(3)WT小鼠實驗組:WT小鼠于手術前24小時尾靜脈注射GdCl3溶液(10 mg/kg),(4)miR-155-/-小鼠實驗組:miR-155-/-小鼠于手術前24小時尾靜脈注射 GdCl3溶液(10 mg/kg)。對各組
7、小鼠進行肝臟部分熱缺血再灌注損傷手術,缺血1小時再灌注6小時后,采集全血血漿檢測ALT及AST水平以評估肝功能,將缺血肝臟標本行HE染色,評價肝臟損傷程度,并且根據(jù)Suzuki’s標準,將肝臟損傷情況半定量進行統(tǒng)計學分析。
結果:WT小鼠陽性條帶為465bp,miR-155-/-小鼠陽性條帶為600bp。經尾靜脈注射GdCl3溶液的WT小鼠和miR-155-/-小鼠,ALT和AST水平顯著低于相應對照組小鼠轉氨酶水平,差異具有
8、統(tǒng)計學意義(P<0.0001)。并且,注射 GdCl3溶液的WT小鼠和miR-155-/-小鼠的轉氨酶水平沒有明顯差異,差異沒有統(tǒng)計學意義(P>0.05)。而注射磷酸鹽緩沖液的WT小鼠,ALT和AST水平顯著高于注射磷酸鹽緩沖液的miR-155-/-小鼠的轉氨酶。兩實驗組肝臟病理學切片與相應的對照組相比,組織損傷明顯減弱。WT小鼠對照組術前24小時腹腔注射磷酸鹽緩沖液,肝臟經歷缺血再灌注后,可見肝臟明顯淤血,肝細胞索紊亂排列,不同程度的
9、水腫變性和空泡狀變,可見片狀壞死,伴有炎性細胞浸潤。miR-155-/-小鼠對照組,肝臟損傷較 WT小鼠對照組顯著減弱,Suzuki’s評分顯著降低,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。實驗組,WT小鼠和miR-155-/-小鼠肝組織結構破壞減少,可見少許灶狀壞死及點狀細胞變性壞死,大部分的小葉中央靜脈及肝細胞索結構尚清晰,肝臟淤血減弱,肝竇排列整齊,炎性細胞浸潤明顯減少。
結論:miR-155缺失通過作用于 Kupffer細
10、胞,進一步減輕肝臟部分熱缺血再灌注損傷。
第三部分miR-155缺失通過調節(jié)Kupffer細胞極化減輕小鼠肝臟部分熱缺血再灌注損傷
目的:探討miR-155缺失減輕小鼠肝臟部分熱缺血再灌注損傷與其調節(jié)Kupffer細胞極化的關系。
方法:對WT小鼠及miR-155-/-小鼠做肝臟部分熱缺血再灌注損傷,缺血1小時再灌注6小時后,采集全血血漿檢測ALT及AST水平以評估肝功能,將缺血肝臟標本行HE染色,評價肝臟
11、損傷程度,并且根據(jù)Suzuki’s標準,將肝臟損傷情況半定量進行統(tǒng)計學分析。用TUNEL技術,檢測組織中肝細胞凋亡的情況。qRT-PCR檢測肝組織中炎性因子mRNA表達水平。密度梯度離心法分離小鼠肝臟中Kupffer細胞,流式細胞術檢測肝臟缺血再灌注損傷后 Kupffer細胞的表型及分型差異。提取 WT小鼠及miR-155-/-小鼠腹腔巨噬細胞,并貼壁純化,將細胞分4組:A組:WT小鼠腹腔巨噬細胞未刺激組,B組:miR-155-/-小鼠
12、腹腔巨噬細胞未刺激組,C組:WT小鼠腹腔巨噬細胞+ LPS(50ng/ml)刺激24小時,D組:miR-155-/-小鼠腹腔巨噬細胞+ LPS(50ng/ml)刺激24小時。收集每組細胞,流式檢測腹腔巨噬細胞表型及分型的差異;ELISA檢測腹腔巨噬細胞培養(yǎng)液中TNF-α和IL-10濃度。Transwell共培養(yǎng)研究 Kupffer細胞和巨噬細胞對肝細胞凋亡的影響。
結果:miR-155-/-小鼠組ALT和AST水平明顯低于WT
13、小鼠組。肝臟組織病理學切片顯示:與WT小鼠組相比,miR-155-/-小鼠組肝臟組織壞死區(qū)域明顯減小,淤血也較少,肝組織結構破壞明顯減弱。WT小鼠組肝組織淤血明顯增強,肝細胞索嚴重破壞,可見多個片狀壞死區(qū)域。與WT小鼠組相比,miR-155-/-小鼠組Suzuki’s評分顯著降低,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.001),并且凋亡的肝臟細胞也顯著減少(P<0.05)。缺血再灌注損傷后,兩組小鼠肝臟中炎性因子的表達水平均明顯升高,miR-15
14、5-/-小鼠肝臟TNF-α的表達水平明顯低于WT小鼠,而miR-155-/-小鼠肝臟IL-10的表達水平明顯高于WT小鼠。肝臟缺血再灌注后,miR-155-/-小鼠組Kupffer細胞CD80、CD86和MHC-Ⅱ的表達水平明顯低于WT組小鼠,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。miR-155-/-小鼠組,M1型(CD11c+CD206-) Kupffer細胞較 WT組明顯減少,而 M2型(CD11c-CD206+)Kupffer較WT
15、組卻明顯增多,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。分離純化的腹腔巨噬細胞純度>90%,可以滿足實驗需要。無LPS刺激組(PBS孵育組),miR-155-/-小鼠來源的腹腔巨噬細胞CD80、CD86和MHC-Ⅱ的表達明顯低于WT小鼠來源的巨噬細胞,差異具有統(tǒng)計學意義(CD80 P<0.01;CD86 P<0.05; MHC-ⅡP<0.05)。經LPS刺激后,兩種小鼠來源的巨噬細胞CD80、CD86、CD40和MHC-Ⅱ的表達均明顯升高,但
16、是,miR-155-/-小鼠來源的腹腔巨噬細胞 CD80、CD86、CD40和MHC-Ⅱ的表達水平與WT小鼠組相比明顯降低,差異顯著(CD80 P<0.01;CD86 P<0.05; CD40 P<0.01;MHC-ⅡP<0.05)。無LPS刺激組,miR-155-/-小鼠來源的腹腔巨噬細胞M1型(CD11c+CD206-)細胞比例顯著低于WT小鼠組(P<0.01),而其M2型(CD11c-CD206+)細胞比例卻顯著高于WT小鼠組(P
17、<0.05)。經LPS刺激后,兩種小鼠來源的巨噬細胞 M1型細胞比例均升高,M2型細胞比例均降低。但是,miR-155-/-小鼠組M1型細胞比例明顯低于WT小鼠組相比,M2型細胞比例明顯高于WT小鼠組,差異具有統(tǒng)計學意義(M1 P<0.05,M2 P<0.01)。LPS刺激后,巨噬細胞培養(yǎng)上清中TNF-α和IL-10濃度均明顯升高,miR-155-/-小鼠組巨噬細胞培養(yǎng)上清中TNF-α的濃度明顯低于 WT小鼠組,而 miR-155-/-
18、小鼠組巨噬細胞培養(yǎng)上清中 IL-10的濃度明顯高于WT小鼠組,差異具有統(tǒng)計學意義(P值均小于0.05)。巨噬細胞和Kupffer細胞加速肝細胞凋亡;miR-155-/-小鼠來源的Kupffer細胞較 WT小鼠來源的Kupffer細胞對肝細胞促凋亡作用明顯減弱,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。
結論:miR-155缺失可以通過調節(jié)Kupffer細胞,抑制其向M1型分化,而促進其向M2型分化,減少炎性因子TNF-α分泌,而促進
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